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如何培养小鼠神经元细胞
点击次数:3 更新时间:2026-01-06
 

     小鼠神经元细胞培养是神经科学研究中的核心技术之一,广泛用于研究神经发育、突触功能、神经退行性疾病及药物筛选。常见的培养类型包括:

    原代神经元培养:直接从小鼠脑组织(如海马、大脑皮层、背根节)分离,保留体内特性但不可长期传代。

    永生化细胞系:如HT-22细胞系,可传代培养,适合高通量实验。

一、核心操作流程

‌取材与消毒‌

选E17.5天孕鼠(或出生后5-7天小鼠),酒精消毒后取脑。

显微镜下分离目标区域(如皮层、海马),避免混入其他细胞。

‌消化与过滤‌

用木瓜蛋白酶消化10-20分钟,终止后过滤去除杂质。

离心后重悬细胞,用台盼蓝染色计数。

‌接种与换液‌

按密度接种(如六孔板1.0-1.2×10⁶个/孔),4小时后换神经元专用培养基。

每3天换液,保持细胞活性。

二、关键细节

‌无菌操作‌:提前紫外线消毒超净台,全程酒精消毒。

‌消化时间‌:皮层/海马神经元10-20分钟,过长易损伤细胞。

‌培养基‌:神经元专用培养基(如Neurobasal)效果更佳。

三、注意事项

操作时保持环境稳定,避免温度波动。

鉴定可用B-Tubulin-ll免疫荧光,纯度可达90%以上。


 
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